ELECTROFORESIS DE LA HEMOGLOBINA

Fecha: 29 de enero, 2015

Fundamento:  Separar las moléculas de la hemoglobina mediante la electroforesis

Material: Gradilla, tubos  de centrífuga, pipeta pasteur, pipetas graduadas, centrífuga, fuente de alimentación, cubeta, puente, bandejas, placa de vidrio, rodillo, capilar, vaso de precipitado, tubo de ensayo, agitador

Reactivos: suero fisiológico, agua destilada, solución decolorante (ácido acético 5%), solución transparentadora (metanol+ciclohezanona+ácido acético glacial), cloroformo, metanol, tampón pH 8'8, colorante (negro amido).
Muestra: Hemolizado (preparado de sangre anticoagulada)
Desarrollo: 
-Realizamos el hemolizado de la siguiente manera:

• Ponemos 3 ml de sangre anticoagulada en 2 tubos de centrífuga.
• Centrifugamos a 3500 rpm durante 10 minutos y retiramos el sobrenadante.
• Añadimos 4-5 ml de suero fisiológico, homogeneizamos y volvemos a centrifugar.
• Lavamos 3 veces más (en total realizamos 4 lavados)
• En el último lavado, nos quedamos con el sedimento (aproximadamente 1 ml).
• Al sedimento le añadimos medio volumen de cloroformo y 1'5 volumenes de agua destilada (en nuestro caso al tener 1 ml de sedimento añadimos 0'5 ml de cloroformo y 1'5 ml de agua destilada) y volvemos a homogenizar.
•  Volvemos a centrifugar pero a 3500 rpm durante 20 minutos.
• Cogemos el sobrenadante (hemolizado) y lo añadimos en un tubo de ensayo, ya que es la muestra que necesitamos.

-Ponemos la solución tampón en la cubeta y colocamos una tira de cellogel en la cubeta y lo empapamos de tampón durante 10 minutos.

-Preparamos la fuente de alimentación, la cubeta y los electrodos correctamente (el rojo es el ánodo (+) y el negro es el cátodo (-)).

-Sacamos la tira de la cubeta, la secamos un poco con papel de filtro

-Colocamos la tira en el puente de manera que la cara absorbente esté hacia arriba (ponemos la esquina cortada en la derecha y mirando hacia nosotros).

-Sabiendo que el hemolizado irá del cátodo al ánodo, pondremos una marca lo más cerca del cátodo para indicar dónde colocaremos la muestra.

-Empapamos un capilar con el hemolizado y dónde hemos colocado la marca añadimos una línea fina de hemolizado.

-Tapamos la cubeta y ponemos en marcha el alimentador, a 400 voltios durante 15 minutos.

-En una bandeja, ponemos negro amido, en otras tres ponemos ácido acético al 5 %, en otra metanol y en otra solución transparentadora.

-Pasado el tiempo de la electroforesis, colocamos la tira de cellogel (boca abajo) en la bandeja de negro amido, durante 10 minutos y agitando la bandeja (lo colocamos en un agitador).

-Pasado el tiempo, colocamos la tira en la bandeja de ácido acético y hacemos 3 lavados de 10 minutos en total (también agitándolo).

-Pasado el tiempo, colocamos la tira en metanol durante 1 minuto.

-Colocamos la tira en la solución transparentadora entre 2 y 3 minutos.

-Sacamos la tira de la  solución transparentadora, la colocamos en una placa de vidrio (cara absorbente hacia abajo) y la aplastamos con el rodillo.

-Colocamos la placa de vidrio en la estufa hasta que la tira quede transparente (5-6 minutos).

Observaciones: La electroforesis de la hemoglobina permite detectar anomalías hemoglobínicas cuantitativas y cualitativas. 
Resultados: 

Interpretación de los resultados: La electroforesis no ha salido bien, ya que no se distingue ninguna banda.
Hoja de trabajo
1.¿De qué material son las tiras empleadas en esta técnica? Las tiras empleadas son de Acetato de celulosa.

2.¿Cuál es el decolorante del rojo Ponceau? El decolorante es la solución acuosa de ácido acética al 5%.  

3.¿Cómo se llama el aparato que lee las bandas de las tiras y las transforma en curvas de área mensurable? Se llama fotodensitómetro.

4.¿En qué enfermedad aparece una banda electroforética de HB S? Aparece en la anemia falciforme

5.¿Cuál es la Hb normal más electronegativa? La Hb normal más electronegativa  es la Hb A.