CONTAJE DE RETICULOCITOS

Fecha: 27 de noviembre,2014.

Fundamento: Observar reticulocitos al microscopio óptico mediante la tinción con colorantes vitales.

Material: Microscopio, tubos de hemólisis, pipetas Pasteur, portas, baño de agua, papel de filtro, embudo, tarro, vaso de precipitado, varilla, vidrio de reloj, balanza, probeta, parafilm y portaobjetos.

Muestra: sangre anticoagulada.

Desarrollo:
-Preparamos el colorante:

• En una probeta medimos 8o ml de solución salina y 20 ml de citrato sódico, lo vertemos en un vaso de precipitados.
• Pesamos 1 g de azul cresil brillante, lo añadimos en el vaso de precipitado y lo mezclamos con una varilla.
• Filtramos el colorante y lo añadimos a un tarro (previamente etiquetado).

-En un tubo de hemólisis echamos tres gotas dfe colorante y 3 gotas de sangre.

-Homogenizamos suavemente y lo tapamos con parafilm.

-Introducimos el tubo en el baño de agua a 37ºC durante 5 minutos.

-Pasado ese tiempo volvemos a homogenizar.

-Tomamos una gota, la colocamos en un portaobjetos y hacemos una extensión.

-Una vez seca, la colocamos en el microscopio y la observamos.

Resultados: 

Interpretación de los resultados: No se pueden observar reticulocitos ya que la sangre utilizada lleva mucho tiempo en la nevera y los resultados no son concluyentes.

Hoja de trabajo:

1.¿Qué son los reticulocitos? Los reticulocotos son hematíes maduros.

2.¿Qué tipo de tinción estamos utilizando? Una tinción supravital

3. ¿Por qué hacemos la corrección del porcentaje de reticulocitos?  Porque es un valor relativo referido a una cifra normal de hematíes. 

4.¿Qué nos expresa el IPR? Nos da un valor numérico de la estimulación hematopoyética por encima de la actividad de la línea base normal.